Resistencia antimicrobiana de bacterias aisladas de clínicas veterinarias de la ciudad de Ibagué, Colombia

  • María del Pilar Sánchez Universidad Cooperativa de Colombia
  • Norma Patricia Gutiérrez Universidad Cooperativa de Colombia
  • Mónica Yamile Padilla Universidad Cooperativa de Colombia
  • Leidy Lorena Suárez Universidad Cooperativa de Colombia
Palabras clave: Resistencia a antibióticos, clínicas veterinarias, conjugación bacteriana, nosocomial, Antibiotic resistance, veterinary clinics, bacterial conjugation, nosocomia

Resumen

Resumen

Objetivo: Aislar bacterias que circulan en clínicas veterinarias de la ciudad de Ibagué, conocer su perfil de resistencia a antimicrobianos y en algunas, su capacidad de transferir dicha resistencia a bacterias sensibles. Materiales y métodos: Se tomaron muestras de 10 clínicas a las que se les realizó cultivo bacteriológico, identificación bioquímica, antibiograma y pruebas de conjugación bacteriana para transmitir dicha resistencia. El diseño metodológico fue de tipo cuasi-experimental, el análisis de los resultados se hizo mediante estadística descriptiva. Resultados: En todas las áreas de las 10 clínicas se encontraron bacterias potencialmente patógenas multirresistentes que pertenecían a 8 de 16 especies aisladas. Los microorganismos que aparecieron con mayor frecuencia en los diferentes sitios de las clínicas fueron: Staphylococcus intermedius, Acinetobacter baumannii, Pantoea agglomerans, Klebsiella pneumoniae y Burkhordelia cepacia. Los lugares donde se aislaron microorganismos multirresistentes con más frecuencia fueron el piso de consulta externa y la mesa de examen clínico. La resistencia se presentó principalmente a amoxicilina y cloranfenicol. El estudio muestra la presencia de patógenos potenciales de causar infecciones nosocomiales, que se constituyen en reservorio de genes de resistencia a los antibióticos para las bacterias patógenas no resistentes.

Abstract

Objective: To isolate bacteria circulating in veterinary clinics in the city of Ibague for knowing its antimicrobial resistance profile and in some cases, its ability to transfer this resistance to susceptible bacteria. Materials and Methods: Samples of 10 clinics that underwent bacterial culture, biochemical identification, antimicrobial susceptibility testing and bacterial conjugation to transfer this resistance were taken. The methodological design was quasi-experimental and the analysis of the results was made using descriptive statistics. Results: In all areas of the 10 clinical multiresistant potentially pathogenic bacteria which belonged to 8 of 16 species isolated were found. The microorganisms that occurred more frequently in different clinical places were: Staphylococcus intermedius, Acinetobacter baumannii, Pantoea agglomerans, Klebsiella pneumoniae and Burkhordelia cepacia. The places where multiresistant microorganisms were most frequently isolated were the outpatients’ floor and the clinical examination table. The resistance occurred mainly to amoxicillin and chloramphenicol. The study shows the presence of potential pathogens causing nosocomial infections, which constitute a reservoir of resistance genes to antibiotics for non-resistant pathogenic bacteria.

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Biografía del autor/a

María del Pilar Sánchez, Universidad Cooperativa de Colombia
Mg. Microbiología. Profesora Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia. Grupo de investigación IMPRONTA Universidad Cooperativa de Colombia, sede Ibagué. Ibagué, Colombia.
Norma Patricia Gutiérrez, Universidad Cooperativa de Colombia
Mg. Administración de empresas con énfasis en sistemas integrados de gestión. Profesora Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia. Grupo de investigación IMPRONTA. Universidad Cooperativa de Colombia, sede Ibagué. Ibagué, Colombia.
Mónica Yamile Padilla, Universidad Cooperativa de Colombia
MVZ. Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia. Universidad Cooperativa de Colombia, sede Ibagué. Ibagué, Colombia.
Leidy Lorena Suárez, Universidad Cooperativa de Colombia
MVZ. Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia. Universidad Cooperativa de Colombia, sede Ibagué. Ibagué, Colombia.

Referencias

FAO; OIE; OMS. Comunicado No 11/317. Boletín ONU, Sede de la Reunión técnica de alto nivel sobre enfermedades zoonóticas. México, Cuba, República Dominicana: Centro de Información de las Naciones Unidas; 2011.

Andrews B. Antimicrobial use in animal husbandry and its relationship to resistant bacteria in human health. Paris. In OIE International standards on antimicrobial resistance. Paris: 2013.

Diaz F. Antimicrobial use in animals: analysis of the OIE survey on monitoring of the quantities of antimicrobial agents used in health. Paris. In OIE International standards on antimicrobial resistance. Paris: 2013

Scott RD. The direct medical costs of health care-associated infections in U.S. hospitals and the benefits of prevention. National center for preparedness, detection, and control of infectious diseases. 2009.

Comité Internacional de la OIE. Resolución XXX. Directrices para el control de la resistencia a los antimicrobianos. París: 2003.

Justine A, Johnson D. Nosocomial infections. The veterinary clinics small animal practice. 2002; 32:1101-1126.

Benedict KM, Morley PS, Van Metre DC. Characteristics of biosecurity and infection control programs at veterinary teaching hospitals. Journal of the American Veterinary Medical Association. 2008;233(5): 767- 773.

Zordan S, Prenger-Berninghoff E, Weis R, Van der Reijden T, Van den Broek P, Baljer G, Dijkshoorn Lenie. Multidrug-resistant Acinetobacter baumannii in veterinary clinics, Germany. Emerg Infect Dis. 2011;17(9):1751-4.

Haenni M, Ponsin C, Metayer V, Medaille C, Madec J. Veterinary hospital-acquired infections in pets with a ciprofloxacin-resistant CTX-M-15-producing Klebsiella pneumoniae ST15 clone. J Antimicrob Chemother. 2012;67(3):770-1.

Weese JS, Faires M, Rousseau J, Bersenas AM, Mathews KA. Cluster of methicillin-resistant Staphylococcus aureus colonization in a small animal intensive care unit. J Am Vet Med Assoc. 2007;231(9):1361-4.

Julian T, Singh A, Rousseau J, Weese JS. Methicillin-resistant staphylococcal contamination of cellular phones of personnel in a veterinary teaching hospital. BMC Research Notes 2012,5:193.

Murphy C, Reid-Smith RJ, Boerlin P, Weese JS, Prescott JF, Janecko N, Hassard L, McEwen SA. Escherichia coli and selected veterinary and zoonotic pathogens isolated from environmental sites in companion animal veterinary hospitals in southern Ontario. Can Vet J 2010;51:963–972.

Youn JH, Park YH, Hang’ombe B, Sugimoto C. Prevalence and characterization of Staphylococcus aureus and Staphylococcus pseudintermedius isolated from companion animals and environment in the veterinary teaching hospitalin Zambia, Africa. Comparative Immunology, Microbiology and Infectious Diseases. 2014;37(2):123– 130.

Mackay D. Key success factors for surveys of antimicrobial sales and use in the European Union. O.I.E. Conferencia Mundial de la OIE sobre el uso responsable y prudente de los agentes antimicrobianos en los animales. París:2013.

Donado P, Clavijo V, León M. Prevalence, risk factors, and antimicrobial resistance (AMR) profiles of Salmonella sp. in commercial broiler farms in two important poultry-producing regions of Colombia. JFP. 2011, 75(6):1134-1138.

Vargas J, Máttar S, Monsalve S. Bacterias patógenas con alta resistencia a antibióticos: estudio sobre reservorios bacterianos en animales cautivos en el zoológico de Barranquilla. Infectio. 2010; 14(1):6-19.

Clinical and Laboratory Standars Institute (CLSI). Performance standards for antimicrobial susceptibility testing. Document M100-S18. Eighteenth edition ed.; 2009.

Calderón R, Sacsaquispe R, Pasterán F.G, Galas M.F, Javier Soto J.P y cols. Caracterización molecular de klebsiella pneumoniae y Enterobacter cloacae productoras de ß-lactamasas de espectro extendido tipo shv-5 en una unidad de cuidados intensivos neonatal de lima. Rev peru med exp salud pública 2003;20(3).

Clinical and Laboratory Standards Institute CLSI. Methods for dilution antimicrobial susceptibility tests for bacteria that grow aerobically; approved standard. 2012;32(2)

Sasaki T, Kikuchi K, Tanaka Y, Takahashi N, Shinichi Kamata S, and Hiramatsu K. Reclassification of phenotypically identified Staphylococcus intermedius strains. J clinl Microbiol.2007;45(9):2770–2778

DeBoer D. Canine staphylococcal pyoderma’, US Companion Animal Health. 2006:26-28

Sanz L, Junco C. Infecciones bacterianas de las heridas operatorias-Identification of the etiology of bacterial infections of surgical wounds. Hospitales Veterinarios. 2009; 1(1).

Jara OA, Avendaño RP, Navarro VC. Identificación y estudio de susceptibilidad antimicrobiana de bacterias potencialmente responsables de infecciones nosocomiales en los hospitales veterinarios de la Universidad de Chile. Av. Cs. Vet. 2009;1 & 2: 11-17.

Howard A, O’Donoghue M, Feeney A, Sleator RD. Acinetobacter baumannii. An emerging opportunistic pathogen. Virulence. 2012;3(3):243-250.

Lemos EV, De la Hoz Restrepo F, Alvis N, Quevedo E, Cañon O, León Y. Mortalidad por Acinetobacter baumannii en unidades de cuidados intensivos en Colombia. Rev Panam Salud Publica. 2011;30(4): 287– 94.

Gil DM Bacteremia de curso fatal por Burkholderia cepacia: Revisión de la literatura a propósito de un caso clínico. Rev Chil Infect. 2001;18(1): 41-44

Sousa SA, Ramos CG, and Letãio JH. Burkholderia cepacia Complex: Emerging multihost pathogens equipped with a wide range of virulence factors and determinants. Int J Microbiol. Volume 2011, Article ID 607575, 9 pages doi:10.1155/2011/607575

Frias A. Burkholderia cepacia ( B. cepacia), a new pathogen in nosocomial infections clinic cases. Enf Inf. Microbiol. 2008; 28(1):19-23.

Collobert C, Fortier G, Perrin R, Letot G, Andrioud D. Bacteria and fungi isolated from equine tracheobronchial aspirates. Prat Vet Equin. 1995;27:91-96.

Akkoç A, Kocabiyik Al, Özyigit MÖ, Cangül IT, Yilmaz R, Özakin c. Burkholderia cepacia and aeromonas hydrophila septicemia in an african grey parrot (psittacus erithacus erithacus). turkish journal of veterinary & animal sciences. 2008;32(3):233-236.

Fariñas MC, Martínez-M L. Infecciones causadas por bacterias gramnegativas multirresistentes: enterobacterias, Pseudomona aeruginosa, Acinetobacter baumannii y otros bacilos. / Enferm Infecc Microbiol Clin. 2013; 31(6):402–409

Chaparro JL, Hernández YK, Castellanos V, Arcila VH. Aislamiento, identificación y antibiograma de las bacterias presentes en el Centro médico quirúrgico veterinario Universidad Cooperativa de Colombia. Rev Col Cienc Pec. 2005;18(4):381-381.

Ocana C, Rocchi A, Gasparotto I, et al. Bacteriemia por enterobacterias en adultos en un hospital universitario: análisis de cinco años. Rev. Argent. Microbiol. 2007;39(1):38-43.

Lupión C, López LE, Rodríguez JB. Medidas de prevención de la transmisión de microorganismos entre pacientes hospitalizados. Higiene de manos. Enferm Infecc Microbiol Clin. 2014; 32(9):603–609.

Publicado
2015-05-26
Cómo citar
Sánchez, M., Gutiérrez, N., Padilla, M., & Suárez, L. (2015). Resistencia antimicrobiana de bacterias aisladas de clínicas veterinarias de la ciudad de Ibagué, Colombia. Universidad Y Salud, 17(1), 18-31. Recuperado a partir de http://revistas.udenar.edu.co/index.php/usalud/article/view/2394
Sección
Artículo de investigación científica y tecnológica