Trichoderma COMO PROMOTOR DE CRESCIMENTO EM SOJA
DOI:
https://doi.org/10.22267/rcia.202239E.199Palavras-chave:
Bioinoculant, Fungus, Trichoderma, Glycine max (L.) Merrill, Biomass, NutrientsResumo
Os fungos do gênero Trichoderma são encontrados naturalmente no solo e usados como ingrediente ativo em biofungicidas e também têm atividade como promotores do crescimento das plantas. Este trabalho teve como objetivo avaliar a eficiência do produto TrichoPlus, contendo Trichoderma asperellum, como promotor do crescimento de plantas de soja. Foram realizados quatro ensaios independentes, em períodos diferentes entre 2019 e 2020. Os ensaios foram conduzidos em casa de vegetação e foram examinados os teores de biomassa e nutrientes. No primeiro experimento, entre as diferentes doses de TrichoPlus testadas (3, 4, 5 e 6 g por kg de semente), a melhor dose para a maioria das características avaliadas foi de 5 g por kg de semente. Assim, a inoculação de TrichoPlus a 5 g por kg de semente nos demais experimentos apresentou resultados positivos no acúmulo de biomassa, nitrogênio e fósforo. Com base nos resultados do estudo, o produto TrichoPlus, composto por T. asperellum, pode ser utilizado como um inoculante eficiente, por promover o crescimento de plantas de soja.
Downloads
##plugins.generic.paperbuzz.metrics##
Referências
Alekseeva, K.L.; Smetanina, L.G.; Kornev, A.V. (2019). Biological protection of tomato from Fusarium wilt. AIP Conference Proceedings. 2063(1): 030001. https://doi.org/10.1063/1.5087309
Ministério da Agricultura, Pecuária e Abastecimento. (2019). Mercado de biodefensivos cresce mais de 70% no Brasil em um ano. www.agricultura.gov.br/noticias/feffmercado-de-biodefensivos-cresce-em-mais-de-50-no-brasil
Borsari, A.C.P.; Vieira, L.C. (2022). Mercado e perspectivas dos bioinsumos no Brasil. In: Meyer, M.C.; Bueno, A.F.; Mazaro, S.M.; Silva, J.C. (Eds.). Bioinsumos na cultura da soja. p. 39-52. Brasília, Embrapa.
Brotman, Y.; Gupta K.J.; Viterbo, A. (2010). Trichoderma. Current Biology. 20(9):390-391. https://doi.org/10.1016/j.cub.2010.02.042
Carvalho, D.D.C.; Mello, S.C.M.; Lobo Junior, M.; Silva, M.C. (2011). Control of Fusarium oxysporum f. sp. phaseoli in vitro and on seeds and growth promotion of common bean in early stages by Trichoderma harzianum. Tropical Plant Pathology. 36(1):28-34. http://dx.doi.org/10.1590/S1982-56762011000100004
Chagas, L.F.B.; Castro, H.G.; Colonia, B.S.O.; Carvalho Filho, M.R.; Miller, L.O.; Chagas Junior, A.F. (2016a). Efficiency of Trichoderma spp. as a growth promoter of cowpea (Vigna unguiculata) and analysis of phosphate solubilization and indole acetic acid synthesis. Brazilian Journal of Botany. 38(4):1-11. http://dx.doi.org/10.1007/s40415-015-0247-6
Chagas, L.F.B.; Castro, H.G.; Colonia, B.S.O.; Carvalho Filho, M.R.; Miller, L.O.; Chagas Junior, A.F. (2016b). Efficiency of the inoculation of Trichoderma asperellum UFT-201 in cowpea production components under growth conditions in field. Revista de Ciências Agrárias. 39(3):413-421. https://dx.doi.org/10.19084/RCA15112
Chagas, L.F.B.; Chagas Junior, A.F.; Castro, H.G. (2017a). Phosphate solubilization capacity and indole acetic acid production by Trichoderma strains for biomass increase on basil and mint plants. Brazilian Journal of Agriculture. 92(2):176-185. https://doi.org/10.37856/bja.v92i2.3221
Chagas, L.F.B.; Chagas Junior, A.F.; Soares, L.P.; Fidelis, R.R. (2017b). Trichoderma na promoção do crescimento vegetal. Revista de Agricultura Neotropical. 4(3):97-102. https://doi.org/10.32404/rean.v4i3.1529
Chagas, L.F.B.; Martins, A.L.L.; Carvalho Filho, M.R.; Miller, L.O.; Oliveira, J.C.; Chagas Junior, A.F. (2017c). Bacillus subtilis e Trichoderma spp. no incremento da biomassa em plantas de soja, feijão-caupi, milho e arroz. Agri-Environmental Sciences. 3(2):10-18. https://revista.unitins.br/index.php/agri-environmental-sciences/article/view/430
Chagas Junior, A.F.C.; Chagas, L.F.B.; Santos, G.R.; Martins, A.L.L.; Carvalho F.M.R.; Oliveira-Miller, L. (2018). Action of Trichoderma spp. in the control of Fusarium sp., Rhizoctonia solani and Sclerotium rolfsii. Agri-Environmental Sciences, 4(2):9-15. https://doi.org/10.36725/agries.v4i2.420
Chagas Junior, A.F.; Chagas, L.F.B.; Miller, L.O.; Oliveira, J.C. (2019a). Efficiency of Trichoderma asperellum UFT 201 as plant growth promoter in soybean. African Journal of Agricultural Research. 14(5):263-271. http://dx.doi.org/10.5897/AJAR2018.13556
Chagas Junior, A.F.; Chagas, L.F.B.; Colonia, B.S.O.; Miller, L.O.; Oliveira, J.C. (2019b). Trichoderma asperellum (UFT201) functions as a growth promoter for soybean plant. African Journal of Agricultural Research. 14(33):1772-1777. http://dx.doi.org/10.5897/AJAR2019.13985
Contreras-Cornejo, H.A.; López-Bucio, J.S.; Méndez-Bravo, A.; Macías-Rodriguéz, L.; Ramos-Vega, M.; Guevara-García, A.A.; Lópes-Bucio, J. (2015). Mitogen-activated protein kinase 6 and ethylene and auxin signaling pathways are involved in Arabidopsis root-system architecture alterations by Trichoderma atroviride. Molecular Plant Microbe Interactions. 28(6):701–10. http://dx.doi.org/10.1094/MPMI-01-15-0005-R
Contreras-Cornejo, H.A.; Macías-Rodríquez, L.; Del-Val, E.; Larsen, J. (2016). Ecological functions of Trichoderma spp. and their secondary metabolites in the rhizosphere: interactions with plants. FEMS Microbiology Ecology. 92:1-17. https://doi.org/10.1093/femsec/fiw036
Das, T.; Mahapatra, S.; Das, S. (2017). In vitro compatibility study between the Rhizobium and native Trichoderma isolates from lentil rhizospheric soil. International Journal of Current Microbiology and Applied Sciences. 6(8):1757-1769. https://doi.org/10.20546/ijcmas.2017.608.208
Egamberdieva, D.; Wirth, S.J.; Shurigin, V.V.; Hashen, A.; Allah, E.F.A. (2017). Endophytic bacteria improve plant growth, symbiotic performance of chickpea (Cicer arietinum L.) and induce suppression of root rot caused by Fusarium solani under salt stress. Frontiers in Microbiology. 8:1-13. https://doi.org/10.3389/fmicb.2017.01887
Embrapa - Empresa Brasileira de Pesquisa Agropecuária. (2011). Manual de métodos de análise de solo. 2a ed. Rio de Janeiro, EMBRAPA – CNPS: Centro Nacional de Pesquisa de Solos. 225p.
Harman, G.E.; Howell, C.R.; Viterbo, A.; Chet, I.; Lorito, M. (2004). Trichoderma species-opportunistic, avirulent plant symbionts. Nature Reviews Microbiology. 2(1):43-56. https://doi.org/10.1038/nrmicro797
Jesus, E.P.; Souza, C.H.E.; Pomella, A.W.V.; Costa, R.L.; Seixas, L.; Silva, R.B. (2011). Avaliação do potencial de Trichoderma asperellum como condicionador de substrato para a produção de mudas de café. Cerrado Agrociências. 2:7–19.
Karaoglu, S.A.; Bozdeveci, A.; Pehlivan, N. (2018). Characterization of local Trichoderma sp. as potential bio-control agents, screening of in vitro antagonistic activities and fungicide tolerance. Hacettepe Journal of Biology and Chemistry. 46(2):247–261. https://doi.org/10.15671/HJBC.2018.233
Li, R.X.; Cai, F.; Pang, G.; Shen, Q.R.; Li, R.; Chen, W. (2015). Solubilisation of phosphate and micronutrients by Trichoderma harzianum and its relationship with the promotion of tomato plant growth. PLoS One. 10(6):e0130081. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0130081
Machado, D.F.M.; Parzianello, R.F.; Silva, A.C.F.; Antoniolli, Z.I. (2012). Trichoderma no Brazil: O Fungo e Bioagente. Revista de Ciências Agrárias. 35(1):274-288. https://doi.org/10.19084/rca.16182
Malavolta, E.; Vitti, G.C.; Oliveira, S.A. (1997). Princípios, métodos e técnicas de avaliação do estado nutricional. In: Malavolta E, Vitti GC, Oliveira as (Eds). Avaliação do estado nutricional de plantas: princípios e aplicações. 2ª ed. p.115-230. Piracicaba: Potafos.
Mendoza-Mendoza, A.; Zaid, R.; Lawry, R.; Hermosa, R.; Monte, E.; Horwitz, B.A.; Mukherjee, P.K. (2018). Molecular dialogues between Trichoderma and roots: role of the fungal secretome. Fungal Biology Reviews. 32(2):62-85. https://doi.org/10.1016/j.fbr.2017.12.001
Meyer, M.C.; Mazaro, S.M.; Silva, J.C. (2020). Trichoderma: uso na agricultura. Brasília: Embrapa. 538p.
Meyer, M.C.; Mazaro, S.M.; Silva, J.C. (2022). Bioinsumos na cultura da soja. Brasília: Embrapa. 550p.
Monte, B.H.; Bettiol, E.; Hermosa, R. (2019). Trichoderma e seus mecanismos de ação para o controle de doenças de plantas. In: Meyer, M.C.; Mazaro, S.M.; Silva, J.C. (Eds.). Trichoderma: Uso na Agricultura. p. 181-199. Brasília: Embrapa.
Oliveira, R.S.; Chagas, L.F.B.; Martins, A.L.L.; Souza, M.C.; Luz, L.L.; Gomes, F. L.; Chagas Junior, A. F. (2022). Trichoderma in the phytopathogenic biocontrol. Bulgarian Journal of Agricultural Science. 28(4):717–724.
Peel, M.C.; Finlayson, B.L.; Mcmahon, T.A. (2007). Update world map of the Köppen-Geiger climate classification. Hydrology and Earth System Science. 11:1633-1644. https://doi.org/10.5194/HESS-11-1633-2007
Poole, P.P.; Ramachandran, V.; Terpolilli, J. (2018). Rhizobia: from saprophytes to endosymbionts. Nature Reviews Microbiology. 18(5):291-303. https://doi.org/10.1038/nrmicro.2017.171
Rubio, M.B.; Hermosa, R.; Vicente, R.; Gómez-Acosta, F.A.; Morcuende, R.; Monte, E.; Bettiol, W. (2017). The combination of Trichoderma harzianum and chemical fertilization leads to the deregulation of phytohormone networking, preventing the adaptive responses of tomato plants to salt stress. Frontiers in Plant Science. 8(294):1-14. https://doi.org/10.3389/fpls.2017.00294
Samuels, G.J.; Lieckfeldt, E.; Nirenberg, H.I. (1999). Trichoderma asperellum, a new species with warted conidia, and redescription of T. viride. Sydowia. 51(1):71-88.
Samuels, G.J.; Ismaiel, A.; Bon, M.C.; De Respinis, S.; Petrini, O. (2010). Trichoderma asperellum sensu lato consists of two cryptic species. Mycologia. 102(4):944-966. https://doi.org/10.3852/09-243
Santos, H.A.; Mello, S.C.M.; Peixoto, J.R. (2010). Associação de isolados de Trichoderma spp. e ácido indol-3-butírico (AIB) na promoção de enraizamento de estacas e crescimento de maracujazeiro. Bioscience Journal. 26(6): 966-972.
Saravanakumar, K.; Yu, C.; Dou, K.; Wang, M.; Li, Y.; Chen, J. (2016). Synergistic effect of Trichoderma-derived antifungal metabolites and cell wall degrading enzymes on enhanced biocontrol of Fusarium oxysporum f. sp. Cucumerinum. Biological Control. 94:37-46. https://doi.org/10.1016/j.biocontrol.2015.12.001
Silva, V.N.; Guzzo, S.D.; Lucon, C.M.M.; Harakava, R. (2011). Promoção de crescimento e indução de resistência à antracnose por Trichoderma spp. em pepineiro. Pesquisa Agropecuária Brasileira. 46(12):1609-1618. https://doi.org/10.1590/S0100-204X2011001200005
Silva, J.C.; Torres, D.B.; Lustosa, D.C.; Filippi, M.C.C.; Silva, G.B. (2012). Rice sheath blight biocontrol and growth promotion by Trichoderma isolates from the Amazon. Amazonian Journal of Agricultural and Environmental Sciences. 55(4):243-250. http://dx.doi.org/10.4322/rca.2012.078
Woo, S.L.; Pepe, O. (2018). Microbial consortia: promising probiotics as plant biostimulants for sustainable agriculture. Frontiers in Plant Science. 9(1801):1-6. https://doi.org/10.3389/fpls.2018.01801
Woo, S.L.; Ruocco, M.; Vinale, F.; Nigro, M.; Marra, R.; Lombardi, N.; Pascale, A.; Lanzuise, S.; Manganiello, G.; Lorito, M. (2014). Trichoderma-based products and their widespread Use in agriculture. The Open Mycology Journal. 8:71-126.
Zeilinger, S.; Gruber, S.; Bansal, R. (2016). Secondary metabolism in Trichoderma – Chemistry meets genomics. Fungal Biology Reviews. 30(2): 74-90. https://doi.org/10.1016/j.fbr.2016.05.001
Downloads
Publicado
Como Citar
Edição
Seção
Licença
Copyright (c) 2023 Revista de Ciencias Agrícolas
Este trabalho está licenciado sob uma licença Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License.
